Distribución espacial del estado de resistencia a insecticidas y los mecanismos mediados por enzimas de Aedes aegypti en Tapachula, Chiapas, México / Francisco Solis Santoyo
Por: Solis Santoyo, Francisco. Doctor [autor].
Sánchez Guillén, Daniel [director] | Penilla Navarro, Rosa Patricia [co-directora] | Castillo Vera, Alfredo [asesor] | González Gómez, Rebeca [asesora].
Tipo de material: Tesis impreso(a) Editor: Tapachula de Córdova y Ordóñez, Chiapas, México: El Colegio de la Frontera Sur, 2022Descripción: 121 hojas : fotografías, ilustraciones, mapas ; 28 centímetros.Tema(s): Aedes aegypti | Resistencia a los insecticidas | Dengue | Fiebre chikungunya | Infección por el virus zika | Distribución espacial | Control de mosquitosTema(s) en inglés: Aedes aegypti | Insecticide resistance | Dengue | Chikungunya fever | Zika virus infection | Spatial distribution | Mosquitoes controlDescriptor(es) geográficos: Tapachula de Córdoba y Ordóñez, Tapachula (Chiapas, México) Clasificación: TE/595.771097275 / S65 Nota de disertación: Tesis Doctorado en Ciencias en Ecología y Desarrollo Sustentable El Colegio de la Frontera Sur 2022 Nota de bibliografía: Incluye bibliografía Ecología de Artrópodos y Manejo de PlagasNúmero de sistema: 63163Contenidos:Mostrar Resumen:Tipo de ítem | Biblioteca actual | Colección | Signatura | Estado | Fecha de vencimiento | Código de barras |
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Tesis |
Biblioteca Tapachula
Texto colocado en la configuración de la biblioteca Tapachula |
ECOSUR | TE 595.771097275 S65 | Disponible | ECO020014121 |
Tesis Doctorado en Ciencias en Ecología y Desarrollo Sustentable El Colegio de la Frontera Sur 2022
Incluye bibliografía
Resumen.. Capítulo I.. 1. Introducción.. 2. Objetivos.. 2.1 Objetivo General.. 2.2 Objetivos específicos.. 3. Revisión de Literatura.. 3.1 Clasificación taxonómica de Aedes aegypti.. 3.2 Biología de Aedes aegypti.. 3.3 Aedes aegypti - importancia médica.. 3.4 Dengue en México.. 3.5 Chikungunya en México.. 3.6 Zika en México.. 4. Insecticidas.. 4.1 Organoclorados (OCLs).. 4.1.1 Modo de acción de los organoclorados (OCLs).. 4.2 Organofosforados (OPs).. 4.2.1 Modo de acción de los organofosforados (OPs).. 4.3 Carbamatos (CARBs).. 4.3.1 Modo de acción de los carbamatos (CARBs).. 4.4 Piretroides (PIRs).. 4.4.1 Modo de acción de los piretroides (PIRs).. 5. Resistencia a Insecticidas.. 5.1 Mecanismos de resistencia a insecticidas.. 5.1.1 Resistencia cuticular.. 5.1.2 Resistencia metabólica.. 5.1.2.1 Esterasas.. 5.1.2.2 Glutatión S-transferasas (GSTs).. 5.1.2.3 Citocromo P450.. 5.1.3 Alteración en el sitio de acción.. 5.2 Resistencia en Aedes aegypti.. 6. Justificación.. 7. Materiales y Métodos.. 7.1 Área de estudio.. 7.2 Recolecta de mosquitos.. 7.3 Identificación de mosquitos adultos.. 7.4 Bioensayos.. 7.4.1 Concentración letal 50 (CL50).. 7.5. Ensayos bioquímicos.. 7.5.1 Acetilcolinesterasa (AChE).. 7.5.2 Esterasas.. 7.5.3 Glutattion S-transferasas (GST).. 7.5.4 Citocromos P450.. 7.5.5 Proteínas.. 7.6 Detección de mutaciones asociadas a resistencia a insecticidas.. 7.6.1 Extracción de ADN.. 7.6.2 Amplificación de los alelos del canal de sodio.. 7.6.2.1 Alelo Val1016Ile (Gráfico 1).. 7.6.2.2 Phe1534Cys (Gráfico 2).. 7.6.2.3 Ecuación Hardy-Weinberg.. 9. Literatura Citada.. Capítulo II - Insecticide resistance in Aedes aegypti from Tapachula, Mexico: Spatial variation and response to historical insecticide use.. Capítulo III - Current enzyme-mediated insecticide resistance status of Aedes aegypti populations from a dengue-endemic city in southern Mexico.. Capítulo IV - Conclusiones Generales
Las poblaciones de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) de Tapachula, Chiapas, México, se encuentran bajo presión constante de insecticidas para reducir la transmisión de dengue y otras enfermedades, lo cual provoca la aparición de poblaciones resistentes a insecticidas. El objetivo del presente trabajo fue evaluar la resistencia de Ae. aegypti de 26 sitios de Tapachula a piretroides, organofosforados y carbamatos, así como caracterizar los posibles mecanismos involucrados. La tasa de resistencia fenotípica para cada población de mosquitos se determinó comparando la concentración letal 50 (CL50) para cada uno de los insecticidas por sitio con la CL50 de una cepa susceptible. Se encontró resistencia a los piretroides en los 26 sitios de estudio, mientras que para organofosforados y carbamatos se observó baja resistencia. La resistencia genotípica caracterizada por el derribo (kdr) fue evaluada midiendo la frecuencia de las mutaciones Ile1016 y Cys1534 del canal de sodio de células nerviosas, cuyos rangos fueron de 0.16–0.71 y de 0.8–1 respectivamente. La resistencia de las poblaciones de mosquitos del año 2018 y 2020 estuvo asociada a niveles elevados de glutatión S-transferasas (GST) y de citocromos P450 en todas las poblaciones de mosquitos del 2018. Por otro lado, la actividad de β-esterasas, ρNPA-esterasas y GST disminuyó en el 2020. La resistencia espacio-dependiente observada en este trabajo destaca la importancia de evaluar múltiples sitios dentro de regiones geográficas. La resistencia a piretroides y organofosforados observada en este trabajo está asociada a mecanismos metabólicos similares, con varios grupos de enzimas más efectivos que el incremento de una sola familia en particular. Estos resultados tienen serias implicaciones en el modo y tipo de insecticidas usados actualmente para el control de mosquitos en zonas urbanas. spa
Ecología de Artrópodos y Manejo de Plagas